免疫沉淀实验技术（IP）

IP是利用抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细菌蛋白质的“prorein A"特异性地结合到免疫球蛋白的FC片段的现象活用开发出来的方法。目前多用精制的prorein A预先结合固化在argarose的beads上，使之与含有抗原的溶液及抗体反应后，beads上的prorein A就能吸附抗原达到精制的目的。

操作流程

1.样品准备:

1）取细胞加入500μl上样Buffer(无溴酚蓝)和50ul 10mg/ml PMSF，混匀，超声波破碎细胞；

2）4℃，12000rpm离心10min；

3）取上清夜，-70℃冻存24h；

4）4℃ 12000rpm再次离心10min，取上清分装，一份用于定蛋白，另一份加入溴酚蓝(0.1%(W/V))后于100℃加热4min，后于-20℃保存待用。

2.定蛋白及计算电泳上样量:

根据总蛋白测定试剂盒说明书操作测定样本中的总蛋白含量，进一步确定电泳上样量。

3.免疫沉淀:

1）准备A蛋白-Sepharose珠：用PBS 洗两遍珠子，然后用PBS配制成50%浓度，建议减掉枪尖部分，避免在涉及琼脂糖珠的操作中破坏琼脂糖珠；

2）准备A蛋白-Sepharose珠-一抗复合物：按每50 μl A蛋白-Sepharose珠中加入10ul 一抗，4℃孵育1 h，8000rpm离心5 min，PBS洗涤3次，加50ulPBS；

3）取100 μg总蛋白，加入50ul A蛋白-Sepharose珠-一抗复合物，4℃轻摇2h，PBS洗涤3次，之后加入50ul 1×SDS凝胶上样缓冲液，100℃变性3 min，以游离抗原、抗体、珠子，8000 rpm室温离心5 min，蛋白上清储于-20℃备用。

4.电泳:

1）安装好电泳装置；

2）根据不同的指标配制相应浓度的分离胶，灌胶约3/5体积，液封(<10%用0.1%SDS,>10%用异丙醇)；

3）30min后，待凝后倾去封液；

4）配5%的浓缩胶，灌胶至距平板顶部2mm处，插入梳子，30min后，待凝后拔出梳子，用去离子水清洗加样孔，用滤纸吸干；

5）上样：各样品取50ug上样，marker取10μl上样(上样前需按说明书进行预处理)；

6）缓慢加入内、外槽缓冲液，接通电源，90v电泳至指示剂进入分离胶后，调电压至150V继续电泳；

7）当指示剂距平板底端25px处时停止电泳。

5.转膜及检测:

1）准备2个Φ300px的平面皿，一个装去离子水浸泡NC膜20min，另一装转移缓冲液浸泡海绵和滤纸20min；

2）取下胶，切除浓缩胶部分后，将分离胶浸入转移缓冲液中约5min；

3）按顺序安装好转膜装置（黑色板-海绵-三层滤纸-凝胶-硝酸纤维膜-三层滤纸-海绵-红色板）；

4）完全排除气泡， 4℃，100mA转膜2h；

5）倾去转膜缓冲液，拆除转膜装置，将硝酸纤维膜放入丽春红中摇床染色15min，用去离子水清洗至能看到条带，后用铅笔标出marker位置，再用去离子水震荡以去除浮色。在右上角剪去一角以辨上下左右；

6）将膜转移至另一容器中，用5%脱脂奶粉封闭, 4℃过夜；

7）将膜转移至尽可能小的容器中并加入稀释好的一抗；

8）37℃摇床孵育约2h；

9）PBST洗涤4次，每次5min；

10）将膜转移至尽可能小的容器中并加入稀释好的二抗，37℃摇床孵育约30min；

11）PBST洗涤4次，每次5min；

12）将膜转移至尽可能小的容器中并加入预先配制好的化学发光底物（A液与B液等体积混和），室温孵育5min；

13）取出NC膜，去尽残液，包好，放入X-光片夹中显影；

14）扫描及分析。