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实验方法
(1)将SD乳鼠在75%酒精中浸泡1-5min,然后固定在泡沫板上,先用碘酒消毒胸腹部,再用酒精消毒。取出无菌剪刀和镊子,先用酒精棉球再次消毒,剪开胸,取心尖部位,快速置于含双抗的预冷的PBS溶液润洗3遍。
(2)剔除周围结缔组织,将心脏置于无菌平皿中,将心脏尽量剪碎,平皿内加入适量0.125%的胰酶,在37度培养箱中,采用分次消化,每次消化5分钟,一共消化8~10次。
(3)每次消化后取上清液,并加入等量的含10%的DMEM/F12培养基,轻轻混匀,中和胰酶的消化,防止消化多度。用100目细胞过滤筛子过滤含细胞的混合液,最后将过滤后的细胞悬液1000R/MIN离心5分钟。离心后收集沉淀,用PBS再次重复离心3次。用细胞培养基将细胞沉淀重悬。于细胞培养瓶中培养。
(4)在培养90分钟左右,将未贴壁的细胞悬液吸出。此时已经贴壁的是心肌成纤维细胞,加入DMEM/F12培养基,放入培养瓶继续培养。
(5)24h换液,并每日观察心肌成纤维细胞的生长。
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