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ICR
SARS-CoV-2(原2019-nCoV, HB-01),由中国疾控中心谭文杰教授提供,通过滴鼻的方式感染人 hACE2 基因的小鼠,感染剂量1× 105TCID50只,感染体积50 μl 只。
3.1 临床表现
hACE2转基因小鼠感染后一般状态尚可,部分小鼠出现竖毛。感染后小鼠体重出现下降,感染 5天时平均体重下降百分比达到5%(图1)
图1. hACE2 转基因小鼠感染后体重下降百分比. 与对照组相比,
**p<0.01, *p<0.05.
3.2 病毒学检测
(1)病毒分离
感染第3天和第5天从肺组织分离病毒,匀浆接种Vero细胞,可发生有明显的细胞病变(图2),在电子显微镜下观察到病毒的特征性结构(图3)。而对照组小鼠没有观察到任何异常现象。
图2. Vero 细胞分离肺组织中病毒左侧:对照组小鼠;右侧:
感染组小鼠
图3电镜观察病毒结构
(2)病毒载量
在小鼠感染后第三天和第五天分别收集主要脏器,用以检测病毒在小鼠体内的分布情况。RT PCR 结果显示,感染后 hACE2 转基因小鼠,只有在肺脏显现出病毒明显存在(图4)。 感染3 天后,肺组织中病毒载量可达到106.5拷贝/ml 感染 5 天后,肺组织中病毒载量可达到10 5.0拷贝/ml(图 5)。
图4. RT-PCR检测肺组织中病毒核酸
图5. RT PCR 检测肺组织中病毒(3 dpi 与5 dpi)
(3)病毒抗原检测
在小鼠感染后第三天和第五天分别收集主要脏器,用免疫荧光检查病毒在小鼠体内的分布情况,发现病毒主要分布于肺脏支气管上皮细胞和肺泡上皮细胞内(图6)。
图6. 免疫荧光检查肺组织中病毒分部(3 dpi)
3.3病理学检查
(1)肺部大体病理
与对照组相比,感染小鼠肺脏大体病理表现为,肺脏表面出现局灶性病变损伤,呈暗红色。
图7. 感染小鼠肺部大体病理.左侧:对照组小鼠;右侧:感染组小鼠
(2)肺部组织病理
用免疫组化观察了肺组织内病毒抗原分布,发现抗原分布于支气管上皮细胞(蓝箭头)、肺泡上皮细胞(黑箭头)和巨噬细胞(红箭头)(图8)。
图8. 免疫组化观察肺组织内病毒抗原分布.400 ×.
小鼠感染后肺组织呈弥漫性中度间质性肺炎改变,可见肺泡隔增宽、炎细胞浸润,血管周围炎细胞浸润(黑色箭头),肺泡腔内可见巨噬细胞(蓝色箭头)及少量蛋白(绿色箭头)渗出(图9)
图9. 感染小鼠肺组织病理
3.3 抗体检测
感染小鼠第14天分离血清,检测到特异性IgG产生(图10)。
图10. 第 14天血清中抗体检测
1.动物模型评价方法
本实验建立的新型冠状病毒动物模型采用监测临床症状、病毒学和病理学 等方法进行分析和鉴定,确定该动物模型成功建立 。
(1)大体观察:临床症状观察包括动物的体重变化一般症状观察(弓背、竖毛、反应度降低等)等。动物感染后主要表现为明显的体重下降,部分动物竖毛,没有其他明显的症状。与其他传染病动物模型类似,体重下降百分比与疾病状态正相关。
(2)病毒学监测发现,在肺组织中可以检测到病毒 RNA 并能分离到活病毒,在组织匀浆中电镜下可以观察到病毒颗粒,证实从被感染动物中可以分离到病毒,分别在感染后第3天和第5天检测到肺组织病毒载量,在病因上成功模拟 COVID 19。
(3)病理学检测发现,被感染动物的肺组织出现间质性肺炎呈弥漫性中度间质性肺炎改变,可见肺泡隔增宽、炎细胞浸润,血管周围炎细胞浸润,肺泡腔内可见巨噬细胞及少量蛋白渗出,在间质性肺炎和巨噬细胞浸润方面与临床一致。
以上三项指标模拟了新型冠状病毒感染肺炎病人的主要指标,证明小鼠模型成立。
2.评价指标体系
根据模型的主要表现,该模型用于研究、疫苗和药物评价时,与模型对照组相比,主要检测干预组的三类指标:
(1)体重下降百分比
与模型对照组相比,观察感染小鼠的体重下降百分比改变情况。
(2)肺组织内病毒载量
与模型对照组相比,检测感染小鼠第3天和第5天肺组织内病毒载量变化情况。
(3)肺组织病理改变
与模型对照组相比,检测感染小鼠间质性肺炎的病理学改变情况。
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